書名: 病原學陰性肺結核診斷治療及質量控制作者名: 陳明亭 周林 周新華本章字數: 2520字更新時間: 2021-12-17 22:53:20
三、分枝桿菌分離培養
分枝桿菌分離培養包括固體培養和液體培養方法,用于分離檢測分支桿菌。固體培養是我國基層目前使用最多的方法,下述將主要針對簡單法固體培養進行描述(圖3-8),液體分離培養方法須嚴格按照廠家說明進行(圖3-9)。分枝桿菌分離培養應選擇2份痰標本進行分離培養。
(一)操作步驟(簡單法)
1.標本前處理和接種
(1)對照標記的患者姓名,在生物安全柜內將約1~2ml標本轉移至相應前處理管中,旋緊痰標本容器螺旋蓋。
(2)視標本性狀,將1~2倍的4%NaOH溶液加入前處理管中,旋緊處理管螺旋蓋,立即開始計時15分鐘。
(3)在生物安全柜內,將處理管在渦旋振蕩器上渦旋振蕩30秒直至痰標本充分液化。
(4)將前處理管置于試管架內,置于生物安全柜內,室溫靜置,直至15分鐘計時結束。
(5)擰開羅氏培養管螺旋蓋,檢查培養基斜面底部的凝固水,如果凝固水過多,則沿著斜面相對的一面的培養管內壁,將凝固水棄去。
(6)用無菌吸管吸取前處理后的痰標本,保持培養基斜面水平,均勻接種至酸性羅氏培養基斜面上,每支培養基接種0.1~0.15ml(約2~3滴),接種時第一滴液體接種至斜面中部,第二滴接種到培養基上部(距離培養基頂端1cm處),旋緊培養管螺旋蓋,輕輕轉動并放低培養管底部,使接種的液體均勻地在斜面上鋪開。
2.孵育
(1)將培養基放置在斜面放置架上,保持培養基斜面水平向上。
(2)連同斜面放置架將培養管置于恒溫培養箱內,(36±1)℃孵育。
(3)待24小時后,直立放置培養管,(36±1)℃條件下繼續孵育。
3.結果判讀
接種后第3日和第7日觀察培養情況,此后每周觀察一次,直至第8周末。每次觀察后要在培養結果記錄本上記錄觀察結果。
(二)操作步驟(液體法)
1.準備培養管
(1)拿出MGIT 7ml生長指示管、生長添加劑、PANTA,檢查MGIT生長指示管有無破損及污染(管中液體出現渾濁)。
(2)將MGIT PANTA與15ml MGIT生長添加劑重新混合。
注意:該混合物在2~8℃可穩定保存7天。在保存前貼上標簽,包括內容物、配制時間、有效期及配制人信息。若7天內不能用完,可當時分裝,置于-20℃以下的溫度,保存6個月。
(3)在生長指示管上標記標本編號。
(4)用移液槍在每個MGIT管內添加溶解后的0.8ml PANTA/生長添加劑混合物,注意操作不要污染管,蓋緊MGIT管。
2.標本前處理和接種
(1)對照標記的患者姓名,在生物安全柜內將約1~2ml標本轉移至相應前處理管中,旋緊痰標本容器螺旋蓋。

圖3-8 分枝桿菌固體培養試驗標準化操作示意圖(簡單法)

圖3-9 分枝桿菌液體培養試驗標準化操作示意圖
(2)視標本性狀,將1~2倍的NALC-NaOH混合溶液加入前處理管中,旋緊處理管螺旋蓋,渦旋震蕩10~20秒,立即開始計時15分鐘。
(3)室溫靜置15分鐘。
(4)加入0.067M的pH為6.8的磷酸鹽緩沖液至45毫升。
(5)離心力3 000×g,離心機溫度為8~10℃,離心15~20分鐘。
(6)在離心期間,按所接種的液體培養基要求,向液體培養基中加入指定量的營養添加劑(如OADC)和抗污染劑(如PANTA)。
(7)離心結束后,將離心筒(杯)取出,在生物安全柜中小心打開離心桶(杯)蓋,取出離心管。
(8)小心棄掉離心管內上清液至含消毒劑的廢液缸中。
(9)加入1ml磷酸鹽緩沖液至離心管中,重懸沉淀。
(10)吸取0.5ml重懸液,接種于液體培養基內。
3.孵育
按照液體培養基的具體要求放置到培養儀器相應的位置進行孵育。
4.結果判讀和報告
(1)如果培養儀器報告陽性,應按照液體培養基的具體要求對培養液進行涂片染色顯微鏡檢查。
(2)如果涂片檢查為抗酸菌陽性,則報告培養陽性,進行進一步鑒定和藥物敏感性試驗。
(3)如果難以確定,可用培養液接種血瓊脂培養板或巧克力瓊脂培養板,如果在24小時內有菌落生長,則判定不是結核分枝桿菌生長。如果涂片檢查發現有非抗酸菌存在,則報告污染。如果任何微生物皆未發現,應繼續培養。
(4)6周培養儀器未報告陽性,則判定為培養陰性。
(三)操作注意事項
1.培養基質量的確認
觀察培養基外觀,酸性羅氏培養基綠色略偏藍,中性羅氏培養基為綠色。如果培養基異常,顏色灰暗,過藍或過黃,均不能使用。另外培養基質地過軟或干涸、勻化性差等均不能使用。每批新制作或新批號的商品化培養基至少要抽取5%進行無菌性測試,有條件時進行敏感性測試。
2.治療前采集痰標本
抗結核治療會降低分離培養陽性率,用于分離培養的痰標本盡可能在治療前采集。
3.分離培養前痰標本保存
若不能在痰標本采集后立即進行分離培養操作,應將痰標本儲存于2~8℃冰箱暫時保存,防止痰液干涸或污染。從收集痰標本至處理痰標本的時間至多不能超過7天。
4.痰標本前處理
確保痰標本處理液濃度為4%,處理時間為自加入前處理液開始至結束15分鐘內,處理時間過短會造成過高的污染率,如果標本量過大,應分批次處理(如每次處理6~8個痰標本),避免因每批處理標本過多,導致處理時間過長而降低培養的陽性率。
5.接種
如果經過正常的前處理過程后,仍有部分肉眼可見的沉渣或痰栓,接種前不要吹打或混勻,直接吸取上層液體接種,減少污染的發生。
接種處理液時盡量鋪滿整個培養基斜面。
6.孵育
接種菌液的培養基應水平放置放置24小時,待菌液完全吸收后再直立放置繼續孵育。
結核分枝桿菌的最適宜生長溫度為37℃左右,溫度過高或過低均會造成結核分枝桿菌停止生長,因此要每日監測培養箱的溫度,確保溫度波動范圍為35~37℃之間。
(四)監控質量指標
每月定期匯總分析反映分枝桿菌分離培養工作的質量指標,連續監測各指標,指標值出現明顯變化應立即查詢原因,并盡快解決。
分枝桿菌分離培養質量指標包括初診患者培養陽性比例、初診患者結核分枝桿菌培養陽性比例、涂陽標本培養陽性比例、培養發生污染比例(固體)、培養發生污染比例(液體)、分離培養周轉時間(固體)、分離培養周轉時間(液體)。
初診患者培養陽性比例=初診患者中培養陽性的患者數量/初診患者中開展培養的總數量
初診患者結核分枝桿菌培養陽性的比例=初診患者中分離培養陽性且菌株經鑒定為結核分枝桿菌的患者數量/初診患者中開展培養的總數量
涂陽標本培養陽性比例=痰涂片鏡檢陽性且培養陽性的標本數量/痰涂片鏡檢陽性且開展分離培養的標本數量
培養發生污染比例=分離培養發生污染的培養管(基)數量/開展分離培養的總培養管(基)數量
分離培養周轉時間=自實驗室接收到標本至實驗室報告分離培養結果報告的時間間隔