- 病原學(xué)陰性肺結(jié)核診斷治療及質(zhì)量控制
- 陳明亭 周林 周新華
- 2287字
- 2021-12-17 22:53:20
二、痰涂片鏡檢
痰涂片鏡檢包括萋-尼氏染色鏡檢方法和熒光染色方法,用于檢測痰標(biāo)本中存在的抗酸桿菌。初診患者應(yīng)收集三份痰標(biāo)本進(jìn)行痰涂片鏡檢。
(一)操作步驟
1.痰涂片的制備
(1)用于痰涂片檢查的載玻片要求
1)一張載玻片上只能涂抹一份痰標(biāo)本。
2)使用一端有磨砂面的無劃痕新玻片,經(jīng)95%乙醇擦拭(或浸泡)脫脂或使用脫脂的載玻片,在玻片一端的1/3處用2B鉛筆注明實(shí)驗(yàn)室序號(hào)及標(biāo)本序號(hào)。
(2)制備涂片
1)在生物安全柜內(nèi)小心打開承載痰標(biāo)本的容器,防止產(chǎn)生氣溶膠或使標(biāo)本外溢。
2)仔細(xì)觀察標(biāo)本,使用折斷的竹簽茬端,挑取痰標(biāo)本中干酪樣、膿樣或可疑部分約0.05~0.1ml,于玻片正面右側(cè)2/3處,均勻涂抹成10mm×20mm卵圓形痰膜。痰膜朝上靜置,自然干燥后(一般約需要30分鐘)進(jìn)行染色鏡檢。
3)涂抹完畢后的痰標(biāo)本,在結(jié)果報(bào)告前應(yīng)暫時(shí)保留。
4)為保證檢驗(yàn)人員的安全,嚴(yán)禁在涂抹痰標(biāo)本的同時(shí),對(duì)載玻片進(jìn)行加熱。
2.萋-尼氏染色法
(1)涂片自然干燥后,放置在染色架上,玻片間距保持10mm以上,火焰固定(在5秒內(nèi)將玻片置于火焰上烤4次)。
(2)滴加石炭酸復(fù)紅染液蓋滿玻片,火焰加熱至出現(xiàn)蒸汽后脫離火焰,保持染色5分鐘。染色期間應(yīng)始終保持痰膜被染色液覆蓋,必要時(shí)可續(xù)加染色液。加溫時(shí)勿使染色液沸騰。
(3)流水自玻片一端輕緩沖洗,沖去染色液,瀝去標(biāo)本上剩余的水。
(4)自痰膜上端外緣滴加脫色劑布滿痰膜,脫色1分鐘。如有必要,須流水洗去脫色液后,再次脫色至痰膜無可視紅色為止。
(5)流水自玻片一端輕緩沖洗,沖去脫色液,瀝去玻片上剩余的水。
(6)滴加亞甲藍(lán)復(fù)染液,染色30秒。
(7)流水自玻片一端輕緩沖洗,沖去復(fù)染液,然后瀝去標(biāo)本上剩余的水,待玻片干燥后鏡檢。
(8)染色合格的玻片,由于被亞甲藍(lán)染色而呈亮藍(lán)色。將染色后的玻片放置在報(bào)紙上,若透過痰膜不能分辨報(bào)紙上的文字,則表明該玻片涂抹過厚。
3.熒光染色法
(1)涂片自然干燥后,放置在染色架上,玻片間距保持10mm以上。火焰固定(在5秒內(nèi)將玻片置于火焰上烤4次)。
(2)滴加金胺O熒光染色劑蓋滿玻片,染色10~15分鐘。流水自玻片一端輕緩沖洗,洗去染色液,瀝去玻片上剩余的水。
(3)痰膜上端外緣滴加脫色劑,蓋滿玻片,脫色3分鐘或至無色,流水自玻片一端輕洗,洗去脫色劑。
(4)加復(fù)染劑復(fù)染1分鐘,瀝去復(fù)染液,流水自玻片一端輕洗,自然干燥后鏡檢。
4.鏡檢
(1)萋-尼氏染色法:
使用10×目鏡的雙目顯微鏡讀片。取染色完畢且已干燥的玻片,痰膜向上放置在玻片臺(tái)上并以卡尺固定。首先使用40×物鏡,轉(zhuǎn)動(dòng)卡尺移動(dòng)玻片至痰膜左端,將光線調(diào)節(jié)至適當(dāng)亮度,調(diào)節(jié)焦距至可見細(xì)胞形態(tài);移開40×物鏡,在玻片上滴1~2滴鏡油,使用100×油鏡進(jìn)行細(xì)致觀察。
(2)熒光染色法:
玻片放置在玻片臺(tái)上并以卡尺固定后,首先以10×目鏡、20×物鏡進(jìn)行鏡檢,發(fā)現(xiàn)疑為抗酸桿菌的熒光桿狀物質(zhì),使用40×物鏡確認(rèn)。在暗背景下,抗酸桿菌發(fā)出黃色熒光,呈桿狀略彎曲。
(二)操作注意事項(xiàng)
1.試劑質(zhì)量的確認(rèn)
對(duì)于自己配制或商品化的染色試劑均要監(jiān)測染色液的質(zhì)量,每次制備或購買一批新的染色液之后,須使用未經(jīng)染色的已知陽性和陰性涂片進(jìn)行染色、鏡檢,并記錄結(jié)果。并在效期內(nèi)使用,嚴(yán)禁使用過期的染色試劑。
2.痰膜制備
選取痰標(biāo)本中膿性、干酪性部分制備痰膜(圖3-2)。

圖3-2 選取痰標(biāo)本中膿性、干酪性部分(A點(diǎn)顯示部位)
制備適宜厚度的痰膜,將已涂抹痰膜并干燥的玻片放置在報(bào)紙上,若透過痰膜不能分辨報(bào)紙上的5號(hào)字則表明該玻片涂抹過厚,若透過痰膜能夠非常清晰地辨別報(bào)紙上的字則表明痰膜涂抹過薄(圖3-3)。

圖3-3 痰膜涂抹的厚度示意圖
3.染色
萋-尼氏染色要進(jìn)行熱染,相比冷染可以提高陽性檢出率。
要保證足夠的染色時(shí)間,萋-尼氏染色方法初染液加熱出現(xiàn)蒸汽后保持5分鐘,熒光染色方法初染液染色至少15分鐘。
每批染色時(shí)要加入1張陽性和1張陰性涂片作為質(zhì)控片對(duì)染色過程及染色劑進(jìn)行質(zhì)量控制。
萋-尼氏染色鏡檢的涂片肉眼觀察染色后的痰膜應(yīng)呈均勻亮藍(lán)色,無紅色斑塊(見圖3-4)。熒光染色涂片呈黃色。

圖3-4 萋-尼氏染色后呈均勻亮藍(lán)色
4.鏡檢
確保顯微鏡的功能正常。
按照結(jié)果報(bào)告標(biāo)準(zhǔn)仔細(xì)觀察足夠的視野數(shù),萋-尼氏染色方法鏡檢時(shí),首先應(yīng)從左向右觀察相鄰的視野。當(dāng)玻片移動(dòng)至痰膜一端時(shí),縱向向下轉(zhuǎn)換一個(gè)視野,然后從右向左觀察,依此類推。
通常20mm的痰膜,使用100×油鏡,每行可觀察約100個(gè)視野。仔細(xì)觀察完300個(gè)視野,一般需要5分鐘以上。報(bào)告1+時(shí)至少觀察300個(gè)視野,報(bào)告2+時(shí)至少觀察100個(gè)視野,報(bào)告3+、4+時(shí)至少觀察50個(gè)視野。熒光染色方法鏡檢報(bào)告陰性、實(shí)際條數(shù)、1+、2+至少觀察50個(gè)視野,3+及以上的陽性結(jié)果至少觀察20個(gè)視野。
鏡下尋找含有大量炎性細(xì)胞存在的區(qū)域,若僅觀察到含有上皮細(xì)胞的區(qū)域往往不能檢出抗酸菌(圖3-5)。

視野-1

視野-2
圖3-5 痰涂片鏡檢鏡下視野
(三)監(jiān)控質(zhì)量指標(biāo)
每月定期匯總分析反映痰涂片鏡檢工作的質(zhì)量指標(biāo),連續(xù)監(jiān)測各指標(biāo),指標(biāo)值出現(xiàn)明顯變化應(yīng)立即查詢?cè)颍⒈M快解決(圖3-6、圖3-7)。
痰涂片鏡檢質(zhì)量指標(biāo)包括初診患者痰涂片鏡檢陽性率、初診患者涂片中低陽性級(jí)別(實(shí)際條數(shù)/300視野、1+)結(jié)果比例、隨訪患者痰涂片鏡檢陽性率、痰涂片鏡檢周轉(zhuǎn)時(shí)間等。
初診患者痰涂片鏡檢陽性率=初診患者痰涂片鏡檢陽性片數(shù)量/初診患者痰涂片鏡檢片總數(shù)量
初診患者涂片中低陽性級(jí)別結(jié)果比例=初診患者低陽性級(jí)別(實(shí)際條數(shù)/300視野、1+)結(jié)果的痰涂片數(shù)量/初診患者陽性痰涂片總數(shù)量
隨訪患者痰涂片鏡檢陽性率=隨訪患者痰涂片鏡檢陽性片數(shù)量/隨訪患者痰涂片鏡檢片總數(shù)量
痰涂片鏡檢周轉(zhuǎn)時(shí)間=自實(shí)驗(yàn)室收到痰標(biāo)本后至實(shí)驗(yàn)室報(bào)告痰涂片鏡檢結(jié)果的時(shí)間間隔

圖3-6 抗酸桿菌涂片鏡檢標(biāo)準(zhǔn)化操作示意圖(萋-尼氏)

圖3-7 抗酸桿菌涂片鏡檢標(biāo)準(zhǔn)化操作示意圖(熒光)